ОБНБиофизика Biophysics

  • ISSN (Print) 0006-3029
  • ISSN (Online) 3034-5278

ВЛИЯНИЕ ЯРОВИЗАЦИИ НА ЭКСПРЕССИЮ ГЕНОВ ЦВЕТЕНИЯ У НУТА

Код статьи
S0006302925020139-1
DOI
10.31857/S0006302925020139
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 70 / Номер выпуска 2
Страницы
347-353
Аннотация
Яровизация, или длительное воздействие холода, существенно ускоряет зацветание и увеличивает урожаи многих культур. Механизмы влияния яровизации на переход к цветению хорошо изучены у модельного организма Arabidopsis thaliana, однако до сих пор не раскрыты у бобовых. Мы рассмотрели действие яровизации на экспрессию генов цветения у одной из важнейших зернобобовых культур – нута. Ответ на яровизацию свойственен для диких видов нута, а у культурных сортов это свойство во многом утрачено. Сравнение экспрессии ортологов основных регуляторов цветения Arabidopsis у дикого и культурного нута показало, что относительные уровни концентраций продуктов генов FTa1 и FTa3 существенно повышались после яровизации независимо от вида. В то же время, ответ на яровизацию генов, активируемых FT, различался между культурным и диким нутом, предполагая отличия механизмов регуляции в генной сети.
Ключевые слова
нут цветение яровизация экспрессия генов
Дата публикации
24.10.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
21

Библиография

  1. 1. Sharma S. and Upadhyaya H. D. Vernalization and photoperiod response in annual wild cicer species and cultivated chickpea. Crop Sci., 55 (5), 2393–2400 (2015). DOI: 10.2135/cropsci2014.09.0598
  2. 2. Pinhasi van-Oss R., Sherman A., Zhang H. B., Vandemark G., Coyne C., and Abbo S. Vernalization response of domesticated × wild chickpea progeny is subject to strong genotype by environment interaction. Plant Breed., 135 (1), 102–110 (2016). DOI: 10.1111/pbr.12325
  3. 3. Gaur P. M., Jukanti A. K., and Varshney R. K. Impact of genomic technologies on chickpea breeding strategies. Agronomy, 2 (3),199–221 (2012).
  4. 4. von Wettberg E., Chang P. L., Başdemir F., Carrasquila-Garcia N., Korbu L. B., Moenga S. M., Bedada G., Greenlon A., Moriuchi K. S., Singh V., Cordeiro M. A., Noujdina N. V., Dinegde K. N., Shah Sani S., Getahun T., Vance L., Bergmann E., Lindsay D., Mamo B. E., Warschefsky E. J., Dacosta-Calheiros E., Marques E., Yilmaz M. A., Cakmak A., Rose J., Migneault A., Krieg Ch. P., Saylak S., Temel H., Friesen M. L., Siler E., Akhmetov Zh., Ozcelik H., Kholova J., Can C., Gaur P., Yildirim M., Sharma H., Vadez V., Tesfaye K., Woldemedhin A. F., Tar’an B., Aydogan A., Bukun B., Penmetsa R. V., Berger J., Kahraman A., Nuzhdin S. V., and Cook D. R. Ecology and genomics of an important crop wild relative as a prelude to agricultural innovation. Nature Commun., 9 (1), 649 (2018). DOI: 10.1038/s41467-018-02867-z
  5. 5. Wigge P. A., Kim M. C., Jaeger K. E., Busch W., Schmid M., Lohmann J. U., and Weigel D. Integration of spatial and temporal information during floral induction in Arabidopsis. Science, 309 (5737), 1056–1059 (2005). DOI: 10.1126/science.1114358
  6. 6. Zeevaart J. A. Leaf-produced floral signals. Curr. Opin. Plant Biol., 11, 541–547 (2008).
  7. 7. Lee J. H., Hong S. M., Yoo S. J., Park O. K., Lee J. S., and Ahn J. H. Integration of floral inductive signals by flowering locus T and suppressor of overexpression of Constans 1. Physiol. Plantarum, 126 (4), 475–483 (2006). DOI :10.1111/j.1399-3054.2006.00619.x
  8. 8. Searle I., He Y., Turck F., Vincent C., Fornara F., Krober S., Amasino R. A., and Coupland G. The transcription factor FLC confers a flowering response to vernalization by repressing meristem competence and systemic signaling in Arabidopsis. Genes Devel., 20 (7), 898–912 (2006). DOI: 10.1101/gad.373506
  9. 9. Mateos J. L., Madrigal P., Tsuda K., Rawat V., Richter R., Romera-Branchat M., Fornara F., Schneeberger K., Krajewski P., and Coupland G. Combinatorial activities of SHORT VEGETATIVE PHASE and FLOWERING LOCUS C define distinct modes of flowering regulation in Arabidopsis. Genome Biol., 16 (1), 31 (2015). DOI: 10.1186/s13059-015-0597-1
  10. 10. Weller J. L. and Ortega R. Genetic control of flowering time in legumes. Front. Plant Sci., 6, 207 (2015). DOI: 10.3389/fpls.2015.00207
  11. 11. Hecht V., Foucher F., Ferrandiz C., Macknight R., Navarro C., Morin J., Vardy M.E., Ellis N., Beltran J.P., Rameau C., and Weller J.L. Conservation of Arabidopsis flowering genes in model legumes. Plant Physiol., 137 (4), 1420–1434 (2005). DOI: 10.1104/pp.104.057018
  12. 12. Laurie R. E., Diwadkar P., Jaudal M., Zhang L., Hecht V., Wen J., Tadege M., Mysore K. S., Putterill J., Weller J. L., and Macknight R. C. The Medicago FLOWERING LOCUS T homolog, MtFTa1, is a key regulator of flowering time. Plant physiology, 156 (4), 2207–2224 (2011). DOI: 10.1104/pp.111.180182
  13. 13. Nelson M. N., Książkiewicz M., Rychel S., Besharat N., Taylor C. M., Wyrwa K., Jost R., Erskine W., Cowling W. A., Berger J. D., Batley J., Weller J. L., Naganowska B., and Wolko B. The loss of vernalization requirement in narrow-leafed lupin is associated with a deletion in the promoter and de-repressed expression of a Flowering Locus T (FT) homologue. New Phytol., 213 (1), 220–232 (2017). DOI: 10.1111/nph.14094
  14. 14. Fudge J. B., Lee R. H., Laurie R. E., Mysore K. S., Wen J., Weller J. L., and Macknight R. C. Medicago truncatula SOC1 Genes Are Up-regulated by Environmental Cues That Promote Flowering. Front. Plant Sci., 9, 496 (2018). DOI: 10.3389/fpls.2018.00496
  15. 15. Taylor C. M., Kamphuis L. G., Zhang W., Garg G., Berger J. D., Mousavi-Derazmahalleh M., Bayer P. E., Edwards D., Singh K. B., Cowling W. A., and Nelson M. N. INDEL variation in the regulatory region of the major flowering time gene LanFTc1 is associated with vernalization response and flowering time in narrow-leafed lupin (Lupinus angustifolius L.). Plant Cell Environ., 42 (1), 174–187 (2019). DOI: 10.1111/pce.13320
  16. 16. Rychel-Bielska S., Plewiński P., Kozak B., Galek R., and KsiaŻkiewicz M. Photoperiod and Vernalization Control of Flowering-Related Genes: A Case Study of the NarrowLeafed Lupin (Lupinus angustifolius L.). Front. Plant Sci., 11, 572135 (2020) DOI: 10.3389/fpls.2020.572135
  17. 17. Surkova S. Y. and Samsonova M. G. Mechanisms of vernalizationinduced flowering in legumes. Int. J. Mol. Sci., 23 (17), 9889 (2022). DOI: 10.3390/ijms23179889
  18. 18. Ridge S., Deokar A., Lee R., Daba K., Macknight R. C., Weller J. L., and Tar'an B. The chickpea early flowering 1 (Efl1) locus is an ortholog of Arabidopsis ELF3. Plant Physiol., 175, 802–815 (2017). DOI: 10.1104/pp.17.00082
  19. 19. Gretsova M., Surkova S., Kanapin A., Samsonova A., Logacheva M., Shcherbakov A., Logachev A., Bankin M., Nuzhdin S., and Samsonova M. Transcriptomic Analysis of Flowering Time Genes in Cultivated Chickpea and Wild Cicer. Int. J. Mol. Sci., 24 (3), 2692. DOI: 10.3390/ijms24032692
  20. 20. Ortega R., Hecht V. F. G., Freeman J. S., Rubio J., Carrasquilla-Garcia N., Mir R. R., Penmetsa R. V., Cook D. R., Millan T., and Weller J. L. Altered expression of an FT cluster underlies a major locus controlling domesticationrelated changes to chickpea phenology and growth habit. Front. Plant Sci., 10, 824 (2019). DOI: 10.3389/fpls.2019.00824.
  21. 21. Rao X., Huang X., Zhou Z., and Lin X. An improvement of the 2ˆ(-delta delta CT) method for quantitative realtime polymerase chain reaction data analysis. Biostatistics, Bioinformatics and Biomathematics, 3 (3), 71–85 (2013).
  22. 22. Hecht V., Laurie R. E., Vander Schoor J. K., Ridge S., Knowles C. L., Liew L. C., Sussmilch F. C., Murfet I. C., Macknight R. C., and Weller J. L. The pea GIGAS gene is a FLOWERING LOCUS T homolog necessary for grafttransmissible specification of flowering but not for responsiveness to photoperiod. Plant Cell, 23 (1), 147–161 (2011). DOI: 10.1105/tpc.110.081042
  23. 23. Sussmilch F. C., Berbel A., Hecht V., Vander Schoor J. K., Ferrandiz C., Madueno F., and Weller J. L. Pea VEGETATIVE2 is an FD homolog that is essential for flowering and compound inflorescence development. Plant Cell, 27 (4), 1046–1060 (2015). DOI: 10.1105/tpc. 115.136150
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека