RAS BiologyБиофизика Biophysics

  • ISSN (Print) 0006-3029
  • ISSN (Online) 3034-5278

Evaluation of the Effect of Riboxin, Copper Chlorophyllin, Indralin and Combined Application of Glutathione and Ascorbic Acid on the Degree of DNA Damage in the Spleen of Mice under Fractionated Irradiation

PII
S0006302925020181-1
DOI
10.31857/S0006302925020181
Publication type
Article
Status
Published
Authors
Volume/ Edition
Volume 70 / Issue number 2
Pages
398-403
Abstract
Using alkaline gel electrophoresis of single cells of the spleen of male ICR (CD-1) mice exposed to five daily exposures to X-ray radiation at a dose of 1.4 Gy, DNA damage was studied on the day of the last irradiation against application of riboxin, or inosine (200 μg/g), copper chlorophyllin (20 μg/g), indralin (50 μg/g) and antioxidants: glutathione (350 μg/g) and ascorbic acid (150 μg/g) together. The 30-day survival of groups of 10 mice was evaluated in parallel.The level of DNA damage when using indralin and riboxin did not differ significantly from the intact mice. However, 1 mouse each from the riboxin and antioxidant groups died to evaluate survival. There were no deaths of mice from other groups, including the irradiated control. The use of antioxidants protected DNA to a small extent. Copper chlorophyllin did not protect DNA compared to the irradiated controls.
Keywords
метод ДНК-комет рентгеновское излучение фракционированное облучение радиозащитные препараты мыши
Date of publication
24.10.2025
Year of publication
2025
Number of purchasers
0
Views
19

References

  1. 1. Stasilowicz-Krzemien A., Gosciniak A., Formanowicz D., and Cielecka-Piontek J. Natural Guardians: Natural Compounds as Radioprotectors in Cancer Therapy. International journal of molecular sciences, 25 (13), 6937 (2024). DOI: 10.3390/ijms25136937
  2. 2. Блохина Т. М., Иванов А. А., Воробьёва Н. Ю., Яшкина Е. И., Никитенко О. В., Бычкова Т. М., Молоканов А. Г., Тимошенко Г. Н., Бушманов А. Ю., Самойлов А. С. и Осипов А. Н. Повреждение ДНК спленоцитов мышей при воздействии вторичного излучения, формирующегося при прохождении пучка 650 МэВ протонов через бетонную преграду. Бюл. эксперим. биологии и медицины, 174 (8), 154–159 (2022). DOI: 10.47056/0365-9615-2022-174-8-154-159
  3. 3. Сирота Н. П. и Кузнецова Е. А. Применение метода ≪Комета тест≫ в радиобиологических исследованиях. Радиац. биология. Радиоэкология, 50 (3), 329–339 (2010).
  4. 4. Niu X., Shen Y., Wen Y., Mi X., Xie J., Zhang Y., and Ding Z. KTN1 mediated unfolded protein response protects keratinocytes from ionizing radiation-induced DNA damage. J. Dermatol. Sci., 114 (1), 24–33 (2024). DOI: 10.1016/j.jdermsci.2024.02.006
  5. 5. Sotomayor C. G., Gonzalez C., Soto M., Moreno-Bertero N., Opazo C., Ramos B., Espinoza G., Sanhueza A., Cardenas G., Yevenes S., Diaz-Jara J., de Grazia J., Manterola M., Castro D., Gajardo A., and Rodrigo R. Ionizing radiation-induced oxidative stress in computed tomographyeffect of vitamin c on prevention of DNA damage: PREVIR-C randomized controlled trial study protocol. J. Clin. Med., 13 (13), 3866 (2024). DOI: 10.3390/jcm13133866
  6. 6. Wei J., Wang B., Wang H., Meng L., Zhao Q., Li X., Xin Y., and Jiang X. Radiation-induced normal tissue damage: oxidative stress and epigenetic mechanisms. Oxid. Med. Cell. Longevity, 2019, 3010342 (2019). DOI: 10.1155/2019/3010342
  7. 7. Игнатов М. А., Блохина Т. М., Сычёва Л. П., Воробьёва Н. Ю., Осипов А. Н. и Рождественский Л. М. Оценка эффективности противолучевых препаратов по фосфорилированию гистона H2AX и микроядерному тесту. Радиац. биология. Радиоэкология, 59 (6), 585–591 (2019). DOI: 10.1134/S0869803119060043
  8. 8. Васин М. В. Противолучевые лекарственные средства (Книга-Мемуар, М., 2020).
  9. 9. Попова Н. Р., Гудков С. В. и Брусков В. И. Природные пуриновые соединения как радиозащитные средства. Радиац. биология. Радиоэкология, 54 (1), 38–49 (2014). DOI: 10.7868/S0869803114010135
  10. 10. Geric M., Gajski G., Mihaljevic B., Miljanic S., Domijan A. M., and Garaj-Vrhovac V. Radioprotective properties of food colorant sodium copper chlorophyllin on human peripheral blood cells in vitro. Mutat. Res. Genetic Toxicol. Environ. Mutagenesis, 845, 403027 (2019). DOI: 10.1016/j.mrgentox.2019.02.008
  11. 11. Averill-Bates D. A. The antioxidant glutathione. Vitamins and hormones, 121, 109–141 (2023). DOI: 10.1016/bs.vh.2022.09.002
  12. 12. Inal M. E., Akgun A., and Kahraman A. Radioprotective effects of exogenous glutathione against whole-body gammaray irradiation: age- and gender-related changes in malondialdehyde levels, superoxide dismutase and catalase activities in rat liver. Methods Find. Exp. Clin. Pharmacol., 24 (4), 209–212 (2002). DOI: 10.1358/mf.2002.24.4.678452
  13. 13. Foyer C. H. and Kunert K. The ascorbate-glutathione cycle coming of age. J. Exp. Botany, 75 (9), 2682–2699 (2024). DOI: 10.1093/jxb/erae023
  14. 14. Ромодин Л. А. и Игнатов М. А. Метод ДНК-комет не выявил снижения повреждений ДНК лимфоцитов, вызванных рентгеновским излучением, при действии натрий-медного хлорофиллина в концентрации до 100 мкмоль/л. Радиац. биология. Радиоэкология, 63 (4), 394–402 (2023). DOI: 10.31857/S0869803123040070
  15. 15. Кузин А. М. Структурно-метаболическая теория в радиобиологии (Наука, М., 1986).
  16. 16. Ромодин Л. А., Никитенко О. В., Бычкова Т. М., Зрилова Ю. А., Родионова Е. Д. и Бочаров Д. А. Сравнительная оценка радиопротекторных свойств медного хлорофиллина, тролокса и индралина в эксперименте на мышах. Бюл. эксперим. биологии и медицины, 177 (3), 316–321 (2024). DOI: 10.47056/0365-9615-2024-177-3-316-321
QR
Translate

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Higher Attestation Commission

At the Ministry of Education and Science of the Russian Federation

Scopus

Scientific Electronic Library