ОБНБиофизика Biophysics

  • ISSN (Print) 0006-3029
  • ISSN (Online) 3034-5278

ОЦЕНКА ВЛИЯНИЯ РИБОКСИНА, МЕДНОГО ХЛОРОФИЛЛИНА, ИНДРАЛИНА И СОВМЕСТНОГО ПРИМЕНЕНИЯ ГЛУТАТИОНА И АСКОРБИНОВОЙ КИСЛОТЫ НА СТЕПЕНЬ ПОВРЕЖДЕНИЯ ДНК В СЕЛЕЗЕНКЕ МЫШЕЙ ПРИ ФРАКЦИОНИРОВАННОМ ОБЛУЧЕНИИ

Код статьи
S0006302925020181-1
DOI
10.31857/S0006302925020181
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 70 / Номер выпуска 2
Страницы
398-403
Аннотация
Методом щелочного гель-электрофореза одиночных клеток селезенки самцов мышей ICR, подвергнутых пяти ежедневным воздействиям рентгеновским излучением в дозе 1.4 Гр, были изучены повреждения ДНК в день последнего облучения на фоне применения в дни облучений рибоксина, или инозина (200 мкг/г), медного хлорофиллина (20 мкг/г), индралина (50 мкг/г) и антиоксидантов: глутатиона (350 мкг/г) и аскорбиновой кислоты (150 мкг/г) совместно. Параллельно оценивалась 30-суточная выживаемость групп из 10 мышей. Уровень повреждений ДНК при применении индралина и рибоксина не имеет значимых отличий от виварного контроля. Однако имелись случаи падежа по одной мыши из групп рибоксина и антиоксидантов для оценки выживаемости. Гибели мышей из других групп, включая облученный контроль, не было. Применение антиоксидантов в небольшой степени защитило ДНК. Медный хлорофиллин не защитил ДНК по сравнению с облученным контролем.
Ключевые слова
метод ДНК-комет рентгеновское излучение фракционированное облучение радиозащитные препараты мыши
Дата публикации
24.10.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
16

Библиография

  1. 1. Stasilowicz-Krzemien A., Gosciniak A., Formanowicz D., and Cielecka-Piontek J. Natural Guardians: Natural Compounds as Radioprotectors in Cancer Therapy. International journal of molecular sciences, 25 (13), 6937 (2024). DOI: 10.3390/ijms25136937
  2. 2. Блохина Т. М., Иванов А. А., Воробьёва Н. Ю., Яшкина Е. И., Никитенко О. В., Бычкова Т. М., Молоканов А. Г., Тимошенко Г. Н., Бушманов А. Ю., Самойлов А. С. и Осипов А. Н. Повреждение ДНК спленоцитов мышей при воздействии вторичного излучения, формирующегося при прохождении пучка 650 МэВ протонов через бетонную преграду. Бюл. эксперим. биологии и медицины, 174 (8), 154–159 (2022). DOI: 10.47056/0365-9615-2022-174-8-154-159
  3. 3. Сирота Н. П. и Кузнецова Е. А. Применение метода ≪Комета тест≫ в радиобиологических исследованиях. Радиац. биология. Радиоэкология, 50 (3), 329–339 (2010).
  4. 4. Niu X., Shen Y., Wen Y., Mi X., Xie J., Zhang Y., and Ding Z. KTN1 mediated unfolded protein response protects keratinocytes from ionizing radiation-induced DNA damage. J. Dermatol. Sci., 114 (1), 24–33 (2024). DOI: 10.1016/j.jdermsci.2024.02.006
  5. 5. Sotomayor C. G., Gonzalez C., Soto M., Moreno-Bertero N., Opazo C., Ramos B., Espinoza G., Sanhueza A., Cardenas G., Yevenes S., Diaz-Jara J., de Grazia J., Manterola M., Castro D., Gajardo A., and Rodrigo R. Ionizing radiation-induced oxidative stress in computed tomographyeffect of vitamin c on prevention of DNA damage: PREVIR-C randomized controlled trial study protocol. J. Clin. Med., 13 (13), 3866 (2024). DOI: 10.3390/jcm13133866
  6. 6. Wei J., Wang B., Wang H., Meng L., Zhao Q., Li X., Xin Y., and Jiang X. Radiation-induced normal tissue damage: oxidative stress and epigenetic mechanisms. Oxid. Med. Cell. Longevity, 2019, 3010342 (2019). DOI: 10.1155/2019/3010342
  7. 7. Игнатов М. А., Блохина Т. М., Сычёва Л. П., Воробьёва Н. Ю., Осипов А. Н. и Рождественский Л. М. Оценка эффективности противолучевых препаратов по фосфорилированию гистона H2AX и микроядерному тесту. Радиац. биология. Радиоэкология, 59 (6), 585–591 (2019). DOI: 10.1134/S0869803119060043
  8. 8. Васин М. В. Противолучевые лекарственные средства (Книга-Мемуар, М., 2020).
  9. 9. Попова Н. Р., Гудков С. В. и Брусков В. И. Природные пуриновые соединения как радиозащитные средства. Радиац. биология. Радиоэкология, 54 (1), 38–49 (2014). DOI: 10.7868/S0869803114010135
  10. 10. Geric M., Gajski G., Mihaljevic B., Miljanic S., Domijan A. M., and Garaj-Vrhovac V. Radioprotective properties of food colorant sodium copper chlorophyllin on human peripheral blood cells in vitro. Mutat. Res. Genetic Toxicol. Environ. Mutagenesis, 845, 403027 (2019). DOI: 10.1016/j.mrgentox.2019.02.008
  11. 11. Averill-Bates D. A. The antioxidant glutathione. Vitamins and hormones, 121, 109–141 (2023). DOI: 10.1016/bs.vh.2022.09.002
  12. 12. Inal M. E., Akgun A., and Kahraman A. Radioprotective effects of exogenous glutathione against whole-body gammaray irradiation: age- and gender-related changes in malondialdehyde levels, superoxide dismutase and catalase activities in rat liver. Methods Find. Exp. Clin. Pharmacol., 24 (4), 209–212 (2002). DOI: 10.1358/mf.2002.24.4.678452
  13. 13. Foyer C. H. and Kunert K. The ascorbate-glutathione cycle coming of age. J. Exp. Botany, 75 (9), 2682–2699 (2024). DOI: 10.1093/jxb/erae023
  14. 14. Ромодин Л. А. и Игнатов М. А. Метод ДНК-комет не выявил снижения повреждений ДНК лимфоцитов, вызванных рентгеновским излучением, при действии натрий-медного хлорофиллина в концентрации до 100 мкмоль/л. Радиац. биология. Радиоэкология, 63 (4), 394–402 (2023). DOI: 10.31857/S0869803123040070
  15. 15. Кузин А. М. Структурно-метаболическая теория в радиобиологии (Наука, М., 1986).
  16. 16. Ромодин Л. А., Никитенко О. В., Бычкова Т. М., Зрилова Ю. А., Родионова Е. Д. и Бочаров Д. А. Сравнительная оценка радиопротекторных свойств медного хлорофиллина, тролокса и индралина в эксперименте на мышах. Бюл. эксперим. биологии и медицины, 177 (3), 316–321 (2024). DOI: 10.47056/0365-9615-2024-177-3-316-321
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека