ОБНБиофизика Biophysics

  • ISSN (Print) 0006-3029
  • ISSN (Online) 3034-5278

ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ ФОТОБИОМОДУЛЯЦИИ НА МИКРОБИОТУ КИШЕЧНИКА ЧЕЛОВЕКА В НОРМЕ И ПОСЛЕ КРИОКОНСЕРВАЦИИ

Код статьи
S30345278S0006302925060207-1
DOI
10.7868/S3034527825060207
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 70 / Номер выпуска 6
Страницы
1230-1239
Аннотация
Нарушение состава микробиоты кишечника человека является ключевым фактором развития множества заболеваний. Существующие методы коррекции (пробиотики, трансплантация микроорганизмов и др.) часто инвазивны или недостаточно эффективны. Фотобиомодуляция представляет собой перспективный неинвазивный подход, однако ее прямое влияние на микробиоту не изучено. Целью настоящей работы было исследовать влияние фотобиомодуляции красным (660 нм) и ближним инфракрасным (940 нм) светом на восстановление микробиоты после криогенного повреждения, используемого в качестве стресс-модели. Цельную микробиоту доноров, выделенную из образцов стула, и чистую культуру подвергали замораживанию в жидком азоте, что приводило к гибели ~50% клеток. Затем образцы размораживали и облучали светом в диапазоне малых доз 10–600 Дж/м. Жизнеспособность микроорганизмов оценивали с помощью тест-набора реактисней LIVE/DEAD. Для оценивали также динамику роста в анаэробных условиях при культивировании на микропланшете. Фотобиомодуляция достоверно не влияла на выживаемость интактных (неповрежденных) микроорганизмов. Напротив, облучение ближним инфракрасным светом достоверно (p ≤ 0.05) повышало жизнеспособность микроорганизмов после криоконсервации, как микробиоты кишечника с максимальным эффектом +43% при дозе 40 Дж/м, так и с максимумами +10% (p ≤ 0.05) при дозах 40 и 80 Дж/м. Для была отмечена стимуляция роста на 8% (p ≤ 0.05) при культивировании. Облучение красным светом 660 нм не оказывало выраженных эффектов. Впервые показано, что фотобиомодуляция ближним инфракрасным светом способна эффективно восстанавливать жизнеспособность в опытах на микробиоте человека и культуре микроорганизмов после криогенного повреждения. Криоконсервацию можно использовать как модель повреждений микробиоты кишечника для скрининга физических и химических факторов, потенцирующих восстановление микроорганизмов. Полученные результаты открывают перспективы для разработки неинвазивных методов реабилитации и лечения заболеваний, связанных с дисбактериозом человека, на основе трансабдоминальной фотобиомодуляции.
Ключевые слова
фотобиомодуляция красный свет ближний инфракрасный свет микробиота кишечника бифибобактерии криоконсервация динамика роста
Дата публикации
01.10.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
48

Библиография

  1. 1. Tremaroli V. and Backhed F. Functional interactions between the gut microbiota and host metabolism. Nature, 489 (7415), 242–249 (2012). DOI: 10.1038/nature11552
  2. 2. Шендеров Б. А. Микробная экология человека и ее роль в поддержании здоровья Метаморфозы, 5, 72–80 (2014).
  3. 3. Yatsunenko T., Rey F. E., Manary M. J., Trehan I., Dominguez-Bello M. G., Contreras M., Magris M., Hidalgo G., Baldassano R. N., Anokhin A. P., Heath A. C., Warner B., Reeder J., Kuczynski J., Caporaso J. G., Lozupone C. A., Lauber C., Clemente J., Knights D., Knight R., and Gordon J. I. Human gut microbiome viewed across age and geography. Nature, 486 (7402), 222–227 (2012). DOI: 10.1038/nature11053
  4. 4. Jahani-Sherafat S., Taghavi H., Asri N., Tavirani M. R., Razzaghi Z., and Rostami-Nejad M. R. The effectiveness of photobiomodulation therapy in modulation the gut microbiome dysbiosis related diseases. Gastroenterol. Hepatol. Bed Bench, 16 (4), 386–393 (2023). DOI: 10.22037/ghfbb.v16i4.2687
  5. 5. Дирин В. Н., Наумов С. А., Удут В. В., Вовк С. М. И Гольдберг В. Е. Способ коррекции функционального состояния органов иммунной системы и биологический электростимулятор внутренних органов для его осуществления. Патент РФ № 2145892 от 26.10.1998.
  6. 6. Phypers R., Berisha-Muharremi V., and Hanna R. The efficacy of multiwavelength red and near-infrared transdermal photobiomodulation light therapy in enhancing female fertility outcomes and improving reproductive health: a prospective case series with 9-month follow-up. J. Clin. Med., 13 (23) 7101 (2024). DOI: 10.3390/jcm13237101
  7. 7. Bicknell B., Laakso E. L., Liebert A., and Kiat H. Modifying the microbiome as a potential mechanism of photobiomodulation: a case Report. Photobiomodul. Photomed. Laser Surg., 40 (2), 88–97 (2022). DOI: 10.1089/photob.2021.0057
  8. 8. Чичерин И. Ю., Погорельский И. П., Лундовских И.А., Шабалина М. Р. и Дармов И. В. Трансплантация кишечной микробиоты. Журн. инфектологии, 5 (2), 82–89 (2013).
  9. 9. Храмов Р. Н., Заломова Л. В. и Фесенко Е. Е. (мл.). Фотобиомодуляция микробиоты кишечника человека in vitro с помощью красного и ближнего инфракрасного светодиодного излучения. В сб. материалов конференции ≪Теоретическая и экспериментальная биофизика≫ (Синхробук, Пущино, 2023), сс. 108–110.
  10. 10. Zalomova L. V. and Fesenko E. E. (Jr.). FBS-based cryoprotective compositions for effective cryopreservation of gut microbiota and key intestinal microorganisms. BMC Research Notes, 17 (1), 168 (2024). DOI: 10.1186/s13104-024-06836-2
  11. 11. De Freitas L. F. and Hamblin M. R. Proposed mechanisms of photobiomodulation or low-level light therapy. IEEE J. Sel. Top Quantum Electron, 22 (3), 7000417 (2016). DOI: 10.1109/JSTQE.2016.2561201
  12. 12. Dompe C., Moncrieff L., Matys J., Grzech-Lesniak K., Kocherova I., Bryja A., Bruska M., Dominiak M., Skiba P. M., Shibli J. A., Volponi A. A., and DyszkiewiczKonwinska B. Photobiomodulation-underlying mechanism and clinical applications. J. Clin. Med., 9 (6), 1724 (2020). DOI: 10.3390/jcm9061724
  13. 13. Amaroli A., Ravera S., Zekiy A., Benedicenti S., and Pasquale C. A narrative review on oral and periodontal bacteria microbiota photobiomodulation, through visible and near-infrared light: from the origins to modern therapies. Int. J. Mol. Sci., 23 (3), 1372 (2022). DOI: 10.3390/ijms23031372
  14. 14. Bordea I. R., Hanna R., Chiniforush N., Gradinaru E., Campian R. S., Sirbu A., Amaroli A., and Benedicenti S. Evaluation of the outcome of various laser therapy applications in root canal disinfection: A systematic review. Photodiagn. Photodyn. Ther., 29:101611 (2020). DOI: 10.1016/j.pdpdt.2019.101611
  15. 15. Chung H., Dai T., Sharma S. K., Huang Y.-Y., Caroll J.D., and Hamblin M. R. The nuts and bolts of low-level laser (light) therapy. Ann. Biomed. Eng., 40 (2), 516–533 (2012). DOI: 10.1007/s10439-011-0454-7
  16. 16. van Veen R. L., Sterenborg H. J., Pifferi A., Torricelli A., Chikodze E., and Cubeddu R. Determination of visible near-IR absorption coefficients of mammalian fat using time- and spatially resolved diffuse reflectance and transmission spectroscopy. J. Biomed. Opt., 10 (5), 054004 (2005). DOI: 10.1117/1.2085149
  17. 17. Monod J. The growth of bacterial cultures. Annu. Rev. Microbiol., 3, 371–394 (1949).
  18. 18. Salvy P. and Hatzimanikatis V. Emergence of diauxie as an optimal growth strategy under resource allocation constraints in cellular metabolism. Proc. Natl. Acad. Sci USA, 118 (8), e2013836118 (2021). DOI: 10.1073/pnas.2013836118
  19. 19. Tuchina E. S., Tuchin V. V., Altshuler G. B., and Yaroslavsky I. V. Photodynamic Influence of Red (625 nm) and Infra-Red (805 nm) Radiation on Bacteria P. Acnes Processed by Photosensitizes. Izvestiya of Saratov University. Physics, 8 (1), 21–26 (2008). DOI: 10.18500/1817-3020-2008-8-1-21-26
  20. 20. Karu T. I. Primary and secondary mechanisms of action of visible to near-IR radiation on cells. J. Photochem. Photobiol. B: Biology, 49 (1), 1–17 (1999). DOI: 10.1016/S1011-1344(98)00219-X
  21. 21. Karu T. I., Kalendo G. S., Letokhov V. S., and LobkoV. V. Effect of pulse laser UV-radiation on proliferating and resting HeLa tumor cells. Nuovo Cimento, 24 (2): 273-6 (1984).
  22. 22. Karu T. I., Tiphlova O., Esenaliev R. O., and Letokhov V. Two different mechanisms of low-intensity laser photobiological effects on Escherichia coli. J. Photochem. Photobiol., 24 (3), 155–161 (1994). DOI: 10.1016/1011-1344(94)07016-4
  23. 23. Mardanov A. V., Babykin M. M., Beletsky A. V., Grigiriev A. I., Zinchenko V. V., Kadnikov V. V., Kirpichnikov M. P., Mazur A. M., Nedoluzhko A. V., Novikova N. D., Prokhortchouk E. B., Ravin N. V., Skryabin K. G., and Shestakov S. V. Metagenomic analysis of the dynamic changes in the gut microbiome of the participants of the MARS-500 experiment, simulating long term space flight. Acta Naturae, 5 (3), 116–125 (2013).
  24. 24. Bicknell B., Liebert A., Johnstone D., and Kiat H. Photobiomodulation of the microbiome: implications for metabolic and inflammatory diseases. Lasers Med. Sci., 34 (2), 317–327 (2019). DOI: 10.1007/s10103-018-2594-6
  25. 25. Upadhyay P., Banstola A., Bhayana B., and Wu M. X., Photobiomodulation strengthens muscles via its dual functions in gut microbiota. Adv. Sci., e11582 (2025). DOI: 10.1002/advs.202511582
  26. 26. Chen Y.-M., Weil L., Chiu Y.-S., Hsu Y.-J., Tsai T.-Y., Wang M.-F., and Huang C.-C. Lactobacillus plantarum TWK10 supplementation improves exercise performance and increases muscle mass in mice. Nutrients, 8 (4), 205 (2016). DOI: 10.3390/nu8040205
  27. 27. Huang W. C., Hsu Y. J., Li H., Kan N.W., Chen Y.-M., Lin J.-S., Hsu T.-K., Tsai T.-Y., Chiu Y.-S., and Huang C.-C. Effect of Lactobacillus Plantarum TWK10 on improving endurance performance in humans. Chin. J. Physiol., 61 (3), 163–170 (2018). DOI: 10.4077/CJP.2018.BAH587
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека